2.43
1,65
1,98
0,73
1.88
1.81
2.43
2.2 Standaardstoffen gebruikt in de kalibratiecurve van de relatieve moleculaire massaverdeling: insuline, mycopeptiden, glycine-glycine-tyrosine-arginine, glycine-glycine-glycine
3 Instrumenten en apparatuur
23.2
21.4
22.2
16.1
22.3
20.8
23.9
27.5
Over het algemeen is het aandeel aminozuren in de producten van Sustar hoger dan dat in de producten van Zinpro.
Deel 8 Effecten van gebruik
Effecten van verschillende bronnen van sporenelementen op de productieprestaties en eikwaliteit van legkippen in de late legperiode.
Productieproces
Gerichte chelatie-technologie
Schuifemulsificatietechnologie
Drukspuit- en droogtechnologie
Koel- en ontvochtigingstechnologie
Geavanceerde technologie voor milieubeheer
Bijlage A: Methoden voor het bepalen van de relatieve moleculaire massaverdeling van peptiden
Vaststelling van de norm: GB/T 22492-2008
1 Testprincipe:
Dit werd bepaald met behulp van hoogwaardige gelfiltratiechromatografie. Dat wil zeggen, door gebruik te maken van een poreuze vulstof als stationaire fase, en op basis van het verschil in relatieve molecuulmassa van de te scheiden componenten van het monster, gedetecteerd bij de peptidebinding van de ultraviolette absorptiegolf lengte van 220 nm, werden de chromatogrammen en de bijbehorende gegevens verwerkt met behulp van speciale software voor de bepaling van de relatieve molecuulmassaverdeling door middel van gelfiltratiechromatografie (oftewel GPC-software). Hiermee werd de relatieve molecuulmassa van het sojapeptide en het verdelingsbereik berekend.
2. Reagentia
Het experimentele water moet voldoen aan de specificaties voor secundair water in GB/T6682, en de gebruikte reagentia moeten, behalve in bijzondere gevallen, analytisch zuiver zijn.
2.1 Reagentia omvatten acetonitril (chromatografisch zuiver), trifluorazijnzuur (chromatografisch zuiver),
2.2 Standaardstoffen gebruikt in de kalibratiecurve van de relatieve moleculaire massaverdeling: insuline, mycopeptiden, glycine-glycine-tyrosine-arginine, glycine-glycine-glycine
3 Instrumenten en apparatuur
3.1 Hoogwaardige vloeistofchromatograaf (HPLC): een chromatografisch werkstation of integrator met een UV-detector en GPC-gegevensverwerkingssoftware.
3.2 Mobiele fase vacuümfiltratie- en ontgassingseenheid.
3.3 Elektronische weegschaal: schaalverdeling 0,000 1 g.
4 Bedieningsstappen
4.1 Chromatografische omstandigheden en systeemaanpassingsexperimenten (referentieomstandigheden)
- 4.1.1 Chromatografische kolom: TSKgelG2000swxl300 mm×7,8 mm (binnendiameter) of andere gelkolommen van hetzelfde type met vergelijkbare prestaties, geschikt voor de bepaling van eiwitten en peptiden.
- 4.1.2 Mobiele fase: Acetonitril + water + trifluorazijnzuur = 20 + 80 + 0,1.
- 4.1.3 Detectiegolflengte: 220 nm.
- 4.1.4 Debiet: 0,5 ml/min.
- 4.1.5 Detectietijd: 30 min.
- 4.1.6 Injectievolume van het monster: 20 μL.
- 4.1.7 Kolomtemperatuur: kamertemperatuur.
- 4.1.8 Om ervoor te zorgen dat het chromatografische systeem aan de detectie-eisen voldeed, werd bepaald dat onder de bovengenoemde chromatografische omstandigheden de efficiëntie van de gelchromatografiekolom, d.w.z. het theoretische aantal schotels (N), niet minder dan 10000 mocht bedragen, berekend op basis van de pieken van de tripeptide-standaard (Glycine-Glycine-Glycine).
- 4.2 Productie van standaardcurven voor relatieve moleculaire massa
- De bovenstaande standaardoplossingen van peptiden met verschillende relatieve molecuulmassa's en een massaconcentratie van 1 mg/ml werden bereid door de mobiele fase aan te passen, in een bepaalde verhouding te mengen en vervolgens te filteren door een organisch membraan met een poriegrootte van 0,2 μm tot 0,5 μm. Na filtratie werden de oplossingen in het monster geïnjecteerd, waarna de chromatogrammen van de standaarden werden verkregen. Kalibratiecurves voor de relatieve molecuulmassa en de bijbehorende vergelijkingen werden verkregen door de logaritme van de relatieve molecuulmassa uit te zetten tegen de retentietijd of door middel van lineaire regressie.
4.3 Monsterbehandeling
Weeg nauwkeurig 10 mg monster af in een maatkolf van 10 ml, voeg een kleine hoeveelheid mobiele fase toe en schud gedurende 10 minuten ultrasoon, zodat het monster volledig is opgelost en gemengd. Verdun met de mobiele fase tot de maatstreep en filtreer vervolgens door een organisch fasemembraan met een poriegrootte van 0,2 μm tot 0,5 μm. Het filtraat wordt geanalyseerd volgens de chromatografische voorwaarden in A.4.1.
- 5. Berekening van de relatieve moleculaire massaverdeling
- Na analyse van de in 4.3 bereide monsteroplossing onder de chromatografische omstandigheden van 4.1, kunnen de relatieve moleculaire massa van het monster en het bijbehorende spreidingsbereik worden verkregen door de chromatografische gegevens van het monster in de kalibratiecurve 4.2 in te vullen met behulp van GPC-gegevensverwerkingssoftware. De verdeling van de relatieve moleculaire massa's van de verschillende peptiden kan worden berekend met behulp van de piekoppervlaktenormalisatiemethode, volgens de formule: X = A / A totaal × 100
- In de formule: X - Het massafractiegehalte van een peptide met een relatief moleculair gewicht ten opzichte van het totale aantal peptiden in het monster, %;
- A - Piekoppervlakte van een peptide met relatieve moleculaire massa;
- Totaal A - de som van de piekoppervlakten van elk peptide met een relatieve moleculaire massa, berekend tot één decimaal.
- 6 Herhaalbaarheid
- Het absolute verschil tussen twee onafhankelijke bepalingen die onder herhaalbaarheidsomstandigheden zijn verkregen, mag niet meer dan 15% van het rekenkundig gemiddelde van de twee bepalingen bedragen.
- Bijlage B: Methoden voor de bepaling van vrije aminozuren
- Goedkeuring van de norm: Q/320205 KAVN05-2016
- 1.2 Reagentia en materialen
- Gletsjerazijn: analytisch zuiver
- Perchloorzuur: 0,0500 mol/L
- Indicator: 0,1% kristalvioletindicator (ijsedikzuur)
- 2. Bepaling van vrije aminozuren
De monsters werden gedroogd bij 80 °C gedurende 1 uur.
Plaats het monster in een droge container om het op natuurlijke wijze af te laten koelen tot kamertemperatuur of tot een bruikbare temperatuur.Weeg ongeveer 0,1 g monster af (nauwkeurig tot 0,001 g) in een droge conische kolf van 250 ml.Ga snel door naar de volgende stap om te voorkomen dat het monster omgevingsvocht absorbeert.Voeg 25 ml ijsazijn toe en meng goed gedurende maximaal 5 minuten.Voeg 2 druppels kristalviolet-indicator toe.Titreer met een standaard titratieoplossing van perchloorzuur van 0,0500 mol/L (±0,001) totdat de oplossing van paars naar het eindpunt verandert.
Noteer het volume van de verbruikte standaardoplossing.
- Voer tegelijkertijd de blanco test uit.
- 3. Berekening en resultaten
- Het gehalte aan vrije aminozuren X in het reagens wordt uitgedrukt als een massafractie (%) en wordt berekend volgens de formule: X = C × (V1-V0) × 0,1445/M × 100%, in de formule:
- C - Concentratie van een standaard perchloorzuuroplossing in mol per liter (mol/L)
- V1 - Volume gebruikt voor titratie van monsters met standaard perchloorzuuroplossing, in milliliter (mL).
- Vo - Volume gebruikt voor titratieblanco met standaard perchloorzuuroplossing, in milliliter (mL);
M - Massa van het monster, in gram (g).
| 0,1445: Gemiddelde massa aminozuren equivalent aan 1,00 ml standaard perchloorzuuroplossing [c (HClO4) = 1,000 mol / L]. | 4.2.3 Ceriumsulfaat standaard titratieoplossing: concentratie c [Ce (SO4) 2] = 0,1 mol/L, bereid volgens GB/T601. | |
| Adoptie van normen: Q/70920556 71-2024 | 1. Bepalingsprincipe (ijzer als voorbeeld) | Aminozuur-ijzercomplexen hebben een zeer lage oplosbaarheid in watervrije ethanol, terwijl vrije metaalionen wel oplosbaar zijn in watervrije ethanol. Het verschil in oplosbaarheid tussen beide in watervrije ethanol werd gebruikt om de chelatiesnelheid van aminozuur-ijzercomplexen te bepalen. |
| In de formule: V1 - volume van de ceriumsulfaat-standaardoplossing die is verbruikt voor de titratie van de testoplossing, mL; | Watervrije ethanol; de rest is hetzelfde als clausule 4.5.2 in GB/T 27983-2011. | 3. Analysestappen |
| Voer twee proeven parallel uit. Weeg 0,1 g van het monster, gedroogd bij 103 ± 2 °C gedurende 1 uur, met een nauwkeurigheid van 0,0001 g, voeg 100 ml watervrije ethanol toe om op te lossen, filtreer, was het filterresidu minstens driemaal met 100 ml watervrije ethanol, breng het residu vervolgens over in een erlenmeyer van 250 ml, voeg 10 ml zwavelzuuroplossing toe volgens paragraaf 4.5.3 in GB/T27983-2011, en voer vervolgens de volgende stappen uit volgens paragraaf 4.5.3 "Verwarmen om op te lossen en vervolgens laten afkoelen" in GB/T27983-2011. Voer tegelijkertijd de blanco test uit. | 4. Bepaling van het totale ijzergehalte | 4.1 Het vaststellingsprincipe is hetzelfde als in clausule 4.4.1 van GB/T 21996-2008. |
4.2. Reagentia en oplossingen
| 4.2.1 Gemengd zuur: Voeg 150 ml zwavelzuur en 150 ml fosforzuur toe aan 700 ml water en meng goed. | 4.2.2 Natriumdifenylaminesulfonaat-indicatoroplossing: 5 g/L, bereid volgens GB/T603. | 4.2.3 Ceriumsulfaat standaard titratieoplossing: concentratie c [Ce (SO4) 2] = 0,1 mol/L, bereid volgens GB/T601. | |
| 4.3 Analysestappen | Voer twee parallelle proeven uit. Weeg 0,1 g monster af, nauwkeurig tot op 0,20001 g, en plaats dit in een erlenmeyer van 250 ml. Voeg 10 ml gemengd zuur toe, los dit op en voeg vervolgens 30 ml water en 4 druppels natriumdianilinesulfonaat-indicatoroplossing toe. Voer daarna de volgende stappen uit volgens paragraaf 4.4.2 in GB/T21996-2008. Voer tegelijkertijd een blanco test uit. | 4.4 Weergave van de resultaten | Het totale ijzergehalte X1 van de aminozuur-ijzercomplexen, uitgedrukt als massafractie van ijzer in procenten, werd berekend volgens formule (1): |
| X1=(V-V0)×C×M×10-3×100 | V0 - ceriumsulfaat-standaardoplossing verbruikt voor titratie van blanco-oplossing, ml; | V0 - ceriumsulfaat-standaardoplossing verbruikt voor titratie van blanco-oplossing, ml; | C - Werkelijke concentratie van de standaardoplossing van ceriumsulfaat, mol/L5. Berekening van het ijzergehalte in chelatenHet ijzergehalte X2 in het chelaat, uitgedrukt als massafractie van ijzer in procenten, werd berekend volgens de formule: x2 = ((V1-V2) × C × 0,05585)/m1 × 100 |
| In de formule: V1 - volume van de ceriumsulfaat-standaardoplossing die is verbruikt voor de titratie van de testoplossing, mL; | V2 - ceriumsulfaat-standaardoplossing verbruikt voor titratie van blanco-oplossing, ml;nom1 - Massa van het monster, g. Neem het rekenkundig gemiddelde van de parallelle bepalingsresultaten als de bepalingsresultaten, en het absolute verschil tussen de parallelle bepalingsresultaten mag niet meer dan 0,3% bedragen. | 0,05585 - massa van tweewaardig ijzer uitgedrukt in gram, equivalent aan 1,00 ml ceriumsulfaat-standaardoplossing C[Ce(SO4)2.4H2O] = 1,000 mol/L.nom1 - Massa van het monster, g. Neem het rekenkundig gemiddelde van de parallelle bepalingsresultaten als de bepalingsresultaten, en het absolute verschil tussen de parallelle bepalingsresultaten mag niet meer dan 0,3% bedragen. | 6. Berekening van de chelatiesnelheidChelatiesnelheid X3, de waarde uitgedrukt in %, X3 = X2/X1 × 100Bijlage C: Methoden voor het bepalen van de chelatiesnelheid van Zinpro |
Goedkeuring van de norm: Q/320205 KAVNO7-2016
1. Reagentia en materialen
a) IJsazijn: analytisch zuiver; b) Perchloorzuur: 0,0500 mol/L; c) Indicator: 0,1% kristalvioletindicator (ijsazijn)
2. Bepaling van vrije aminozuren
2.1 De monsters werden gedroogd bij 80 °C gedurende 1 uur.
2.2 Plaats het monster in een droge container om het op natuurlijke wijze af te laten koelen tot kamertemperatuur of tot een bruikbare temperatuur.
2.3 Weeg ongeveer 0,1 g monster af (nauwkeurig tot 0,001 g) in een droge conische kolf van 250 ml.
2.4 Ga snel door naar de volgende stap om te voorkomen dat het monster omgevingsvocht absorbeert.
2.5 Voeg 25 ml ijsazijn toe en meng goed gedurende maximaal 5 minuten.
2.6 Voeg 2 druppels kristalviolet-indicator toe.
2.7 Titreer met een standaard titratieoplossing van 0,0500 mol/L (±0,001) perchloorzuur totdat de oplossing van paars naar groen verandert gedurende 15 seconden zonder van kleur te veranderen. Dit is het eindpunt.
2.8 Noteer het volume van de verbruikte standaardoplossing.
2.9 Voer tegelijkertijd de blanco test uit.
- 3. Berekening en resultaten
- Catalaans
- Physicochemical parameters
V1 - Volume gebruikt voor titratie van monsters met standaard perchloorzuuroplossing, in milliliter (mL).
Vo - Volume gebruikt voor titratieblanco met standaard perchloorzuuroplossing, in milliliter (mL);
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Adres: Nr. 147 Qingpu Road, Shouan Town, Pujiang County, Chengdu City, Sichuan Province, China
Telefoon: 86-18880477902
Producten
Anorganische sporenelementen
- Organische sporenelementen
- Swahili
- Service op maat
- Snelle links
Bedrijfsprofiel
| Application object | Suggested dosage (g/t full-value material) | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Gujarati | Klik hier voor een aanvraag. | © Copyright - 2010-2025: Alle rechten voorbehouden. | Sitemap TOP ZOEKOPDRACHT Telefoon |
| Tel | 86-18880477902 | Javaans | E-mail |
| 8618880477902 | Chinese | Frans | |
| Bird | Chinese | Frans | Duits Spaans |
| Aquatic animals | Japanse | Koreaans | Arabisch Grieks |
| Turks | Italiaans | ||
| Ruminant animal g/head day | January 0.75 | Indonesisch Afrikaans Zweeds |
Pools
- baskisch
- Catalaans
- Physicochemical parameters
Hindi
Lao
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Shona
Bulgaars
- Cebuano
- This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
- The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
- Kroatisch
Nederlands
| Application object | Urdu Vietnamees | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Gujarati | Haïtiaans | Hausa | Kinyarwanda Hmong Hongaars |
| Piglets and fattening pigs | Igbo | Javaans | Kannada Khmer Koerdisch |
| Kirgizisch | Latijns | ||
| Bird | 300～400 | 45～60 | Macedonisch Maleis Malayalam |
| Aquatic animals | 200～300 | 30～45 | 1. Promote growth, improve feed conversion; 2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality. |
Noors
- Pashto
- Appearance: brownish-yellow granules
- Physicochemical parameters
Servisch
Sesotho
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Shona
Sindhi
This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;
Swahili
Tadzjieks
Tamil
Telugu
Thais
| Application object | Urdu Vietnamees | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Jiddisch | Yoruba | Zulu | Kinyarwanda Oriya Turkmen |
| Oeigoeren | 250～400 | 37.5～60 | 1. Improving the immunity of piglets, reducing diarrhea and mortality; 2. Improving palatability, increasing feed intake, increasing growth rate and improving feed conversion; 3. Make the pig coat bright and improve the carcass quality and meat quality. |
| Bird | 300～400 | 45～60 | 1. Improve feather glossiness; 2. improve the laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, and strengthen the coloring ability of egg yolk; 3. Improve anti-stress ability and reduce mortality; 4. Improve feed conversion and increase growth rate. |
| Aquatic animals | January 300 | 45 | 1. Promote growth, improve feed conversion; 2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality. |
| Ruminant animal g/head day | 2.4 | 1. Improve milk yield, prevent mastitis and foof rot, and reduce somatic cell content in milk; 2. Promote growth, improve feed conversion and improve meat quality. |
4. Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
- Product Name: Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
- Appearance: brownish-yellow granules
- Physicochemical parameters
a) Mn: ≥ 10.0%
b) Total amino acids: ≥ 19.5%
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
n=0, 1,2,...indicates chelated manganese for dipeptides, tripeptides, and tetrapeptides
Characteristics of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;
This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
The product can improve the growth rate, improve feed conversion and health status significantly; and improve the laying rate, hatching rate and healthy chick rate of breeding poultry obviously;
Manganese is necessary for bone growth and connective tissue maintenance. It is closely related to many enzymes; and participates in carbohydrate, fat and protein metabolism, reproduction and immune response.
Usage and Efficacy of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
| Application object | Suggested dosage (g/t full-value material) | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Breeding pig | 200～300 | 30～45 | 1. Promote the normal development of sexual organs and improve sperm motility; 2. Improve the reproductive capacity of breeding pigs and reduce reproductive obstacles. |
| Piglets and fattening pigs | 100～250 | 15～37.5 | 1. It is beneficial to improve immune functions, and improve anti-stress ability and disease resistance; 2. Promote growth and improve feed conversion significantly; 3. Improve meat color and quality, and improve lean meat percentage. |
| Bird | 250～350 | 37.5～52.5 | 1. Improve anti-stress ability and reduce mortality; 2. Improve laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, improve eggshell quality and reduce shell breaking rate; 3. Promote bone growth and reduce the incidence of leg diseases. |
| Aquatic animals | 100～200 | 15～30 | 1. Promote growth and improve its anti-stress ability and disease resistance; 2. Improve sperm motility and hatching rate of fertilized eggs. |
| Ruminant animal g/head day | Cattle 1.25 | 1. Prevent fatty acid synthesis disorder and bone tissue damage; 2. Improve reproductive capacity, prevent abortion and postpartum paralysis of female animals, reduce the mortality of calves and lambs, and increase the newborn weight of young animals. | |
| Goat 0.25 |
Part 6 FAB of Small Peptide-mineral Chelates
| S/N | F: Functional attributes | A: Competitive differences | B: Benefits brought by competitive differences to users |
| 1.52 | Selectivity control of raw materials | Select pure plant enzymatic hydrolysis of small peptides | High biological safety, avoiding cannibalism |
| 2 | Directional digestion technology for double protein biological enzyme | High proportion of small molecular peptides | More "targets", which are not easy to saturation, with high biological activity and better stability |
| 3 | Advanced pressure spray & drying technology | Granular product, with uniform particle size, better fluidity, not easy to absorb moisture | Ensure easy to use, more uniform mixing in complete feed |
| Low water content (≤ 5%), which greatly reduces the influence caused by vitamins and enzyme preparations | Improve the stability of feed products | ||
| 4 | Advanced production control technology | Totally enclosed process, high degree of automatic control | Safe and stable quality |
| 5 | Advanced quality control technology | Establish and improve scientific and advanced analytical methods and control means for detecting factors affecting product quality, such as acid-soluble protein, molecular weight distribution, amino acids and chelating rate | Ensure quality, ensure efficiency and improve efficiency |
Part 7 Competitor Comparison
Standard VS Standard
Comparison of peptide distribution and chelation rate of products
| Sustar's products | Proportion of small peptides（180-500） | Zinpro's products | Proportion of small peptides（180-500） |
| AA-Cu | ≥74% | AVAILA-Cu | 78% |
| AA-Fe | ≥48% | AVAILA-Fe | 59% |
| AA-Mn | ≥33% | AVAILA-Mn | 53% |
| AA-Zn | ≥37% | AVAILA-Zn | 56% |
| Sustar's products | Chelation rate | Zinpro's products | Chelation rate |
| AA-Cu | 94.8% | AVAILA-Cu | 94.8% |
| AA-Fe | 95.3% | AVAILA-Fe | 93.5% |
| AA-Mn | 94.6% | AVAILA-Mn | 94.6% |
| AA-Zn | 97.7% | AVAILA-Zn | 90.6% |
The ratio of small peptides of Sustar is slightly lower than that of Zinpro, and the chelation rate of Sustar's products is slightly higher than that of Zinpro's products.
Comparison of the content of 17 amino acids in different products
| Name of amino acids | Sustar's Copper Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA copper | Sustar's Ferrous Amino Acid C helate Feed Grade | Zinpro's AVAILA iron | Sustar's Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA manganese | Sustar's Zinc Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA zinc |
| aspartic acid (%) | 1.88 | 0.72 | 1.50 | 0.56 | 1.78 | 1.47 | 1.80 | 2.09 |
| glutamic acid (%) | 4.08 | 6.03 | 4.23 | 5.52 | 4.22 | 5.01 | 4.35 | 3.19 |
| Serine (%) | 0.86 | 0.41 | 1.08 | 0.19 | 1.05 | 0.91 | 1.03 | 2.81 |
| Histidine (%) | 0.56 | 0.00 | 0.68 | 0.13 | 0.64 | 0.42 | 0.61 | 0.00 |
| Glycine (%) | 1.96 | 4.07 | 1.34 | 2.49 | 1.21 | 0.55 | 1.32 | 2.69 |
| Threonine (%) | 0.81 | 0.00 | 1.16 | 0.00 | 0.88 | 0.59 | 1.24 | 1.11 |
| Arginine (%) | 1.05 | 0.78 | 1.05 | 0.29 | 1.43 | 0.54 | 1.20 | 1.89 |
| Alanine (%) | 2.85 | 1.52 | 2.33 | 0.93 | 2.40 | 1.74 | 2.42 | 1.68 |
| Tyrosinase (%) | 0.45 | 0.29 | 0.47 | 0.28 | 0.58 | 0.65 | 0.60 | 0.66 |
| Cystinol (%) | 0.00 | 0.00 | 0.09 | 0.00 | 0.11 | 0.00 | 0.09 | 0.00 |
| Valine (%) | 1.45 | 1.14 | 1.31 | 0.42 | 1.20 | 1.03 | 1.32 | 2.62 |
| Methionine (%) | 0.35 | 0.27 | 0.72 | 0.65 | 0.67 | 0.43 | January 0.75 | 0.44 |
| Phenylalanine (%) | 0.79 | 0.41 | 0.82 | 0.56 | 0.70 | 1.22 | 0.86 | 1.37 |
| Isoleucine (%) | 0.87 | 0.55 | 0.83 | 0.33 | 0.86 | 0.83 | 0.87 | 1.32 |
| Leucine (%) | 2.16 | 0.90 | 2.00 | 1.43 | 1.84 | 3.29 | 2.19 | 2.20 |
| Lysine (%) | 0.67 | 2.67 | 0.62 | 1.65 | 0.81 | 0.29 | 0.79 | 0.62 |
| Proline (%) | 2.43 | 1.65 | 1.98 | 0.73 | 1.88 | 1.81 | 2.43 | 2.78 |
| Total amino acids (%) | 23.2 | 21.4 | 22.2 | 16.1 | 22.3 | 20.8 | 23.9 | 27.5 |
Overall, the proportion of amino acids in Sustar's products is higher than that in Zinpro's products.
Part 8 Effects of use
Effects of different sources of trace minerals on the production performance and egg quality of laying hens in the late laying period
Production Process
- Targeted chelation technology
- Shear emulsification technology
- Pressure spray & drying technology
- Refrigeration & dehumidification technology
- Advanced environmental control technology
Appendix A: Methods for the Determination of relative molecular mass distribution of peptides
Adoption of standard: GB/T 22492-2008
1 Test Principle:
It was determined by high performance gel filtration chromatography. That is to say, using porous filler as stationary phase, based on the difference in the relative molecular mass size of the sample components for separation, detected at the peptide bond of the ultraviolet absorption wavelength of 220nm, using the dedicated data processing software for the determination of relative molecular mass distribution by gel filtration chromatography (i.e., the GPC software), the chromatograms and their data were processed, calculated to get the size of the relative molecular mass of the soybean peptide and the distribution range.
2. Reagents
The experimental water should meet the specification of secondary water in GB/T6682, the use of reagents, except for special provisions, are analytically pure.
2.1 Reagents include acetonitrile (chromatographically pure), trifluoroacetic acid (chromatographically pure),
2.2 Standard substances used in the calibration curve of relative molecular mass distribution: insulin, mycopeptides, glycine-glycine-tyrosine-arginine, glycine-glycine-glycine
3 Instrument and equipment
3.1 High Performance Liquid Chromatograph (HPLC): a chromatographic workstation or integrator with a UV detector and GPC data processing software.
3.2 Mobile phase vacuum filtration and degassing unit.
3.3 Electronic balance: graduated value 0.000 1g.
4 Operating steps
4.1 Chromatographic conditions and system adaptation experiments (reference conditions)
4.1.1 Chromatographic column: TSKgelG2000swxl300 mm×7.8 mm (inner diameter) or other gel columns of the same type with similar performance suitable for the determination of proteins and peptides.
4.1.2 Mobile phase: Acetonitrile + water + trifluoroacetic acid = 20 + 80 + 0.1.
4.1.3 Detection wavelength: 220 nm.
4.1.4 Flow rate: 0.5 mL/min.
4.1.5 Detection time: 30 min.
4.1.6 Sample injection volume: 20μL.
4.1.7 Column temperature: room temperature.
4.1.8 In order to make the chromatographic system meet the detection requirements, it was stipulated that under the above chromatographic conditions, the gel chromatographic column efficiency, i.e., the theoretical number of plates (N), was not less than 10000 calculated on the basis of the peaks of the tripeptide standard (Glycine-Glycine-Glycine).
4.2 Production of relative molecular mass standard curves
The above different relative molecular mass peptide standard solutions with a mass concentration of 1 mg / mL were prepared by mobile phase matching, mixed in a certain proportion, and then filtered through an organic phase membrane with the pore size of 0.2 μm~0.5 μm and injected into the sample, and then the chromatograms of the standards were obtained. Relative molecular mass calibration curves and their equations were obtained by plotting the logarithm of relative molecular mass against retention time or by linear regression.
4.3 Sample treatment
Accurately weigh 10mg of sample in a 10mL volumetric flask, add a little mobile phase, ultrasonic shaking for 10min, so that the sample is fully dissolved and mixed, diluted with mobile phase to the scale, and then filtered through an organic phase membrane with a pore size of 0.2μm~0.5μm, and the filtrate was analyzed according to the chromatographic conditions in A.4.1.
5. Calculation of relative molecular mass distribution
After analyzing the sample solution prepared in 4.3 under the chromatographic conditions of 4.1, the relative molecular mass of the sample and its distribution range can be obtained by substituting the chromatographic data of the sample into the calibration curve 4.2 with GPC data processing software. The distribution of the relative molecular masses of the different peptides can be calculated by the peak area normalization method, according to the formula: X=A/A total×100
In the formula: X - The mass fraction of a relative molecular mass peptide in the total peptide in the sample, %;
A - Peak area of a relative molecular mass peptide;
Total A - the sum of the peak areas of each relative molecular mass peptide, calculated to one decimal place.
6 Repeatability
The absolute difference between two independent determinations obtained under conditions of repeatability shall not exceed 15% of the arithmetic mean of the two determinations.
Appendix B: Methods for the Determination of Free Amino Acids
Adoption of standard: Q/320205 KAVN05-2016
1.2 Reagents and materials
Glacial acetic acid: analytically pure
Perchloric acid: 0.0500 mol/L
Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)
2. Determination of free amino acids
The samples were dried at 80°C for 1 hour.
Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.
Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask.
Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture
Add 25 mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5 min.
Add 2 drops of crystal violet indicator
Titrate with 0.0500 mol / L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to the end point.
Record the volume of standard solution consumed.
Carry out the blank test at the same time.
3. Calculation and results
The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%) and is calculated according to the formula: X = C × (V1-V0) × 0.1445/M × 100%, in tne formula:
C - Concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)
V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).
Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);
M - Mass of the sample, in grams (g ).
0.1445: Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].
Appendix C: Methods for the Determination of Sustar's chelation rate
Adoption of standards: Q/70920556 71-2024
1. Determination principle (Fe as an example)
Amino acid iron complexes have very low solubility in anhydrous ethanol and free metal ions are soluble in anhydrous ethanol, the difference in solubility between the two in anhydrous ethanol was utilized to determine the chelation rate of amino acid iron complexes.
2. Reagents & Solutions
Anhydrous ethanol; the rest is the same as clause 4.5.2 in GB/T 27983-2011.
3. Steps of analysis
Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of the sample dried at 103±2℃ for 1 hour, accurate to 0.0001g, add 100mL of anhydrous ethanol to dissolve, filter, filter residue washed with 100mL of anhydrous ethanol for at least three times, then transfer the residue into a 250mL conical flask, add 10mL of sulfuric acid solution according to clause 4.5.3 in GB/T27983-2011, and then perform the following steps according to clause 4.5.3 “Heat to dissolve and then let cool” in GB/T27983-2011. Carry out the blank test at the same time.
4. Determination of total iron content
4.1 The principle of determination is the same as clause 4.4.1 in GB/T 21996-2008.
4.2. Reagents & Solutions
4.2.1 Mixed acid: Add 150mL of sulfuric acid and 150mL of phosphoric acid to 700mL of water and mix well.
4.2.2 Sodium diphenylamine sulfonate indicator solution: 5g/L, prepared according to GB/T603.
4.2.3 Cerium sulfate standard titration solution: concentration c [Ce (SO4) 2] = 0.1 mol/L, prepared according to GB/T601.
4.3 Steps of analysis
Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of sample, accurate to 020001g, place in a 250mL conical flask, add 10mL of mixed acid, after dissolution, add 30ml of water and 4 drops of sodium dianiline sulfonate indicator solution, and then perform the following steps according to clause 4.4.2 in GB/T21996-2008. Carry out the blank test at the same time.
4.4 Representation of results
The total iron content X1 of the amino acid iron complexes in terms of mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to formula (1):
X1=(V-V0)×C×M×10-3×100
In the formula: V - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;
V0 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;
C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L
5. Calculation of iron content in chelates
The iron content X2 in the chelate in terms of the mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to the formula: x2 = ((V1-V2) × C × 0.05585)/m1 × 100
In the formula: V1 - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;
V2 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;
C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L;
0.05585 - mass of ferrous iron expressed in grams equivalent to 1.00 mL of cerium sulfate standard solution C[Ce(SO4)2.4H20] = 1.000 mol/L.
m1-Mass of the sample, g. Take the arithmetic mean of the parallel determination results as the determination results, and the absolute difference of the parallel determination results is not more than 0.3%.
6. Calculation of chelation rate
Chelation rate X3, the value expressed in %, X3 = X2/X1 × 100
Appendix C: Methods for the Determination of Zinpro's chelation rate
Adoption of standard: Q/320205 KAVNO7-2016
1. Reagents and materials
a) Glacial acetic acid: analytically pure; b) Perchloric acid: 0.0500mol/L; c) Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)
2. Determination of free amino acids
2.1 The samples were dried at 80°C for 1 hour.
2.2 Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.
2.3 Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask
2.4 Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture.
2.5 Add 25mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5min.
2.6 Add 2 drops of crystal violet indicator.
2.7 Titrate with 0.0500mol/L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to green for 15s without changing color as the end point.
2.8 Record the volume of standard solution consumed.
2.9 Carry out the blank test at the same time.
3. Calculation and results
The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%), calculated according to formula (1): X=C×(V1-V0) ×0.1445/M×100%...... .......(1)
In the formula: C - concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)
V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).
Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);
M - Mass of the sample, in grams (g ).
0.1445 - Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].
4. Calculation of chelation rate
The chelation rate of the sample is expressed as mass fraction (%), calculated according to formula (2): chelation rate = (total amino acid content - free amino acid content)/total amino acid content×100%.
Post time: Sep-17-2025
